ChIP 與 R-ChIP:染色質與 RNA-DNA 互作研究的核心技術
在生命科學研究中,基因表達調控的分子機制一直是探索的熱點。
染色質免疫沉淀(Chromatin Immunoprecipitation, ChIP)和 R-ChIP(RNA-DNA Hybrid Immunoprecipitation)作為兩種關鍵技術,分別從 DNA - 蛋白質和 RNA-DNA 互作層面揭示了表觀遺傳調控的奧秘。
本文將系統(tǒng)介紹這兩項技術原理、應用場景、實驗流程及注意事項,并探討納米抗體技術對其性能的革新。
技術原理:從 DNA 到 RNA-DNA 互作的精準捕獲
R-ChIP 主要用于研究 RNA-DNA 雜交體(R-loop)的分布與功能,其原理與 ChIP 類似,但針對 RNA-DNA 互作進行了優(yōu)化:
應用場景:解析基因調控的多維度工具
2. R-ChIP 的獨特價值
· R-loop 功能研究:R-loop 在轉錄調控、DNA 損傷修復及基因組穩(wěn)定性中起關鍵作用。陳亮課題組利用 R-ChIP 發(fā)現 RNA 聚合酶停滯是 R-loop 形成的重要原因,并揭示了 GC 含量和 DNA 二級結構對 R-loop 動態(tài)變化的影響。
· 疾病機制探索:R-loop 異常與癌癥、神經退行性疾病相關。例如,在骨髓增生異常綜合癥(MDS)中,R-ChIP 發(fā)現剪接因子突變導致造血干細胞 R-loop 水平紊亂,影響基因組穩(wěn)定性。
· RNA 加工與穩(wěn)定性:結合 RNA-seq,研究 R-loop 對 RNA 剪接、轉運及降解的影響。例如,R-ChIP 揭示了 R-loop 在 mRNA 3' 端加工中的作用。
實驗流程:從樣本處理到數據分析的標準化操作
ChIP 實驗流程
1. 交聯
使用甲醛等交聯劑處理細胞或組織,讓蛋白質與 DNA 之間形成共價鍵,穩(wěn)定它們之間的相互作用,將蛋白質 - DNA 復合物固定下來,即便短暫的相互作用也能被捕獲。例如,對于哺乳動物細胞,常使用 1% 甲醛在室溫下交聯 10 - 15 分鐘,之后加入甘氨酸終止交聯反應。
2. 細胞裂解
通過去污劑溶液溶解細胞膜,使交聯的蛋白 - DNA 復合物從細胞或組織中釋放到溶液里 。此步驟可去除胞漿蛋白,降低背景信號 ,提高實驗靈敏度。通常不建議機械裂解細胞,可使用如 Thermo Scientific Pierce 染色質制備模塊等試劑,分離核組分與其他細胞成分 。
3. 染色質片段化
將提取的染色質剪切成較小的片段 ,理想范圍在 200 - 1000bp 。常用方法有機械超聲波處理或微球菌核酸酶(MNase)消化 。超聲波能產生隨機片段,但需專用設備,且要注意控制溫度等;微球菌核酸酶消化可重復性高,更適合處理多個樣本 ,不過酶活性變化等因素可能導致結果有變異 。
4. 免疫沉淀
抗體選擇:挑選合適的 ChIP 驗證抗體 ,這是實驗成功的關鍵。對于哺乳動物樣本,有多種 ChIP 級抗體可選;若靶蛋白無合格抗體,可表達 HA、myc 或 GST 等融合蛋白 ,再用針對親和標記的抗體進行免疫沉淀 。
孵育結合:將抗體與 Protein A/G 微珠等結合 ,隨后與細胞裂解液孵育,形成 “微珠 - 抗體 - DNA 結合蛋白 - DNA” 復合物 ,從而選擇性富集目標蛋白質 - DNA 復合物 ,去除其他無關細胞材料 。
洗滌雜質:用低鹽、高鹽、LiCl 等洗滌緩沖液依次洗滌微珠 ,去除非特異性結合的雜質 。
5. 解交聯與 DNA 回收
解交聯:通過廣泛熱孵育(如 62 - 65°C 孵育一定時間 )或蛋白酶 K 消化蛋白質組分 ,斷開蛋白質與 DNA 之間的交聯 。
DNA 回收:采用酚氯仿結合標準 DNA 純化方法 ,或使用專門的純化柱,從蛋白質片段中分離并回收 DNA 。
6. DNA 分析
運用 PCR、qPCR 或測序(如 ChIP - seq )等技術 ,對回收的 DNA 進行分析 ,鑒定蛋白質結合的特定 DNA 區(qū)域 ,定量分析蛋白質 - DNA 相互作用 。
關鍵注意事項:提升實驗可靠性的細節(jié)把控
ChIP 注意事項
· 抗體選擇:優(yōu)先使用 ChIP 級抗體,通過 ChIP-western 驗證其特異性。避免使用僅適用于 WB 或 IHC 的抗體,因其可能無法識別交聯后的表位。
· 交聯優(yōu)化:過度交聯會降低抗體結合效率,建議通過甲醛濃度梯度實驗確定最佳條件。例如,某些細胞系可能需要縮短交聯時間至 5 分鐘。
· 片段化控制:超聲功率和時間需根據細胞類型優(yōu)化,避免片段過長(>1.5 kbp)或過短(<500 bp)。酶法消化(如 MNase)可產生更均一的片段,適用于低輸入樣本。
R-ChIP 注意事項
· RNaseH1 活性驗證:確保 RHΔ 無催化活性,避免降解 RNA-DNA 雜合體??赏ㄟ^體外酶切實驗驗證,如使用放射性標記的 RNA-DNA 底物檢測切割活性。
· 背景控制:使用陰性對照(如空載細胞)排除非特異性結合,同時設置 IgG 對照組。此外,可通過 RNAse A 處理樣本,驗證信號是否依賴 RNA-DNA 雜合體。
· RNA 保護:全程使用 RNase 抑制劑(如 RNasin),避免 RNA 降解影響實驗結果。在裂解液和洗滌緩沖液中均需添加抑制劑。
05
技術革新:納米抗體賦能CHIP/R-CHIP的精準時代
傳統(tǒng) ChIP/R-ChIP 依賴多克隆或單克隆抗體,存在批次差異、背景高等問題。納米抗體技術的引入徹底改變了這一局面:
技術應用實例:納米抗體偶聯產品在頂尖科研中的驗證
值得關注的是,我們的產品Anti-GFP Magarose beads(KTSM1334)已在國際權威期刊《Nucleic Acids Research》的研究中得到成功應用。在題為《METTL3-mediated m6A modification stabilizes TERRA and maintains telomere stability》的論文中,研究團隊通過 ChIP 實驗揭示了 METTL3 蛋白通過 m6A 修飾調控端粒相關 RNA(TERRA)穩(wěn)定性的機制。
論文鏈接:https://doi.org/10.1093/nar/gkac1027
ChIP 和 R-ChIP 技術為研究染色質水平的基因表達調控提供了強有力的工具。隨著納米抗體技術的引入,尤其是高質量納米抗體瓊脂糖珠偶聯物的應用,使得 ChIP/R-ChIP 實驗在特異性、靈敏度和可重復性方面獲得了顯著提升。
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